ДИНАМИКА РОСТА РАСТЕНИЙ БАЗИЛИК ОБЩЕГО И МЕЛИССЫ, ВЫРАЩИВАЕМОЙ ПОД ЛАМПАМИ ЛЮМИНЕСЦЕНТНЫМИ И СВЕТОДИОДАМИ
ТЕМПЫ РОСТА БАЗИЛИКА И РАСТЕНИЯ МЕЛИССЫ, ВЫРАЩЕННЫЕ ПОД ЛЮМИНЕСЦЕНТНЫМИ СВЕТИЛЬНИКАМИ И СВЕТОДИОДНЫМИ МОДУЛЯМИ
Барбара Фрейзжек, Анна Гольц, Рената Завирска-Войтасик, Беата Яновский
Познанского университета естественных наук
Аннотация. Цель эксперимента заключалась в сравнении влияния светодиодов и люминесцентных ламп в качестве источников света на рост и развитие базилик (Ocimum basilicum L.) и мелиссы (Мелисса лекарственная л.). Эксперимент проводился в росте камер в контролируемых условиях. Реакции растений на применяемые источники света оказались разнообразны. Растения базилика произвели более свежими травами, а также стрелять по высоте под светильники фл. Применяемые источники света не оказывают существенного влияния на площадь листьев или скорость фотосинтеза в этих растениях. Источники света не влияют на темпы роста растений лимон бальзам, но эти растения характеризовались большей стоимости чистых фотосинтеза при выращивании в жидких трубах по сравнению со светодиодами. Можно сделать вывод, что реакция растений на свете применяется индивидуально и зависит от вида.
Ключевые слова: Оцифруем базилик, Мелисса лекарственная, СИД, ФЛ, источники света
ВВЕДЕНИЕ
Свет является основным фактором, влияющим на рост и развитие растений. В значительной степени он определяет внешний вид растений, их рост, а также сроков достижения отдельных этапов развития. Качество света влияет на рост и морфогенез многих растений, выращенных в закрытой системе при искусственных источниках света. В настоящее время, многие виды садовых культур выращиваются под люминесцентные лампы, ДНаТ и светодиодами, которые становятся особенно популярны для овощных культур [Лю с соавт. 2011]. Светодиоды используются как дополнительное освещение для роста растений в соответствии с обычными источниками света, особенно для контроля высоты растений, чувствительных цветения и цветения в [Хо и соавт. 2002, Sttute 2009]. Новое поколение светодиодных ламп излучающих белый свет позволяет полностью заменить люминесцентные лампы в качестве основного источника света. Светоизлучающие диоды являются альтернативой люминесцентных ламп из-за их низкой пропускной ток, малый размер, специфику длины волны, полупроводниковые структуры, низкое ухудшение и долгой жизни [Цзяо и Фань 2003]. Таким образом, светодиоды могут быть пригодны для выращивания растений в контролируемой среде, такой как закрытая система и, следовательно, получили значительное внимание в последние годы. Светодиоды также были рассмотрены в качестве нового источника света для роста и развития многих садовых растений [Морроу 2008].
В замкнутой системе, среде растение можно контролировать точно, как хотелось бы. Годовой объем производства саженцев на площади примерно в 10 раз выше в замкнутой системе, чем в теплице. Он также может быть применен для производства травяных/лекарственных и декоративных растений и листовые овощи, если их высота меньше, чем прибл. 30 см [Козаи и соавт. 2006]. Целью данного исследования было сравнение параметров роста и интенсивности фотосинтеза базилик и лимонный бальзам растений, выращенных в белый свет, излучаемый люминесцентной лампы и светоизлучающие диоды (Сид)
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Исследование проводилось в 2011 году на вырост опытной станции Маршелин, Познанского университета естественных наук, Польша. Семена сладкого basill (Оцифруем базиликум л.) сорт ‘вала’ и мелиссы (Мелисса лекарственная л.) проращивали на белый субстрат торфяной подстилки (Klassmann-Deilman, Германия) в горшках. Велись в 16-ч фотопериоде и день/ночь температура 23/18°с. Относительная влажность воздуха 65-70%. После появления всходов, растения еще выращивают по 28 (базилик) и 35 (бальзам) дней. Следующие два источника света были использованы: ТЛ бы 36ВТ/840 люминесцентные лампы (ЛЛ) и Philips (Польша) и высокомощные твердотельные модуль освещения (светодиодный) (Тип СМД Полупроводник Сеул, Южная Корея), обе с белым светом и длиной волны диапазона 320-780 нм. Растения выращивали в камере, в которой было две, разделенных таблиц с ФЛ ламп и светодиодов. Таким образом, растения были точно такие же условия роста. Столы были размером 1.20 м2. Над каждым столиком висели восемь ламп, длиной 1,20 м. Спектры источников света представлены на рис. 1 и Tab. 1. Плотность фотосинтетического потока фотонов (PPFD, 400-700 нм) на уровне завода был около 160 (ФЛ) и 179 (СИД) мкмоль м-2 с-1 (±14). PPFD измеряется с помощью квантового датчика (пар-10, Sanopan, Польша). Спектрального распределения светового лечения измерялась с помощью спектрорадиометра черный-Комета шарики, 280-900 нм (УФ-ВИС StellarNet Inc.) и. Измерения были сделаны 15 см под лампами, более или менее на высоте верхушек растения.
Количества растений в одном горшке была одинакова и составляла 40 ±5 растений. Они были выращены в горшках 280 см3 и 49 см2 площади посевов. Растения поливают только без питательных веществ на капиллярных матах каждый день. Роста растений параметры были измерены с 7 (базилик) и 14 (сладкий лимон) день после появления всходов, а затем раз в 7 дней на протяжении вегетационного периода; во-вторых измерений на 14-й (21-й сладкой мелиссы), а затем соответственно третий на 21-й (28-й) и четвертый на 28-й (35-й) день культивирования. Сбор урожая задействован ручной резки растений близко к поверхности торфяной субстрат. После сбора урожая, масса свежих материи побегов из данного горшок был полон решимости. Кроме того, измерения высоты растений, длины гипокотиля (только базилик, лимонный бальзам гипокотиль составляет всего несколько миллиметров в длину) и площади листьев были взяты (10 растений с каждого разыгранного банка). Были использованы для расчета поверхности листьев сканер (Мустек 1200 УБ) и программа Площадь (IksmodaR, Польша).
Рис. 1. Спектральное распределение свет-испуская диоды (Сид) и Б – люминесцентные лампы (ФЛ)
Таблица 1. Характеристики источников света
| Светлый цвет | Длина волны (нм) | Светоизлучающие диоды | Люминесцентные лампы (ФЛ) | ||
| PFD (mol·m-2·s-1) | % | PFD (mol·m-2·s-1) | % | ||
| UV | 320–380 | 0.5 | 0.3 | 2.4 | 1.4 |
| Фиолетовый | 380–450 | 15.4 | 15.5 | 21.7 | 12.9 |
| Синий | 450–495 | 30.3 | 16.3 | 12.5 | 7.5 |
| Зеленый | 495–570 | 53.5 | 28.7 | 64.9 | 38.7 |
| Желтый | 570–590 | 18.7 | 10.1 | 4.0 | 2.4 |
| Оранжевый | 590–620 | 21.8 | 11.8 | 19.1 | 11.4 |
| Красный | 620–700 | 26.4 | 14.2 | 39.8 | 23.6 |
| Дальний красный | 700–780 | 5.6 | 3.1 | 3.6 | 2.1 |
| Сумма | 320–780 | 172.2 | 168.0 | ||
| R:FR | 4.6 | 11.1 |
Относительное содержание хлорофилла измеряли с помощью аппарата спад, компании Minolta, в то время как чистый фотосинтез (Пн) и устьичная проводимость (GS) с помощью прибора фотосинтеза (LCpro+ компания ADC BioScientific). Газообмен и устьичную проводимость измеряли с помощью заказных палаты листьев – 6.25 см2. После стационарного ставки были записаны (прибл. 1 ч), листья были удалены из камеры и площадь листьев измеряли. Фотосинтетического тариф был рассчитан на основании следующей формулы: а = usc, где: нам – массового расхода воздуха на м2 площади листовой поверхности (мкмоль СО2 м-2 с-1), c – разница в концентрации СО2 через камеру разбавления исправлениями (мкмоль моль -1). Расход около 200 мл / мин. 1 был использован. Устьичную проводимость водяного пара рассчитывается по формуле: г = 1/РС, где РС = устьичного сопротивления для водяного пара (м2 с-1 моль-1). Измерения флуоресценции хлорофилла были приняты с использованием модулированного флуориметр (Fluorometr ОС 1 под-ФЛ Optiscience). Темные адаптировать параметры, используемые для определения максимального квантового выхода ФС II в (фотосистема II): ФВ/ФМ = (ФМ – ФО)/ФМ (ФО – это темно-адаптированы первоначальный минимальный флуоресценции, а также FM – максимальная флуоресценция измеряется в течение первого импа ульс сатурации после наступления темноты адаптации [Максвел и Джонсон 2000]. Флуоресценцию хлорофилла измеряли через час после окончания периода освещения. ПШ и ГШ была измерена до полудня в условия, в которых выращивались растения. Второй полностью развитых листьев был использован для измерения содержания хлорофилла, флуоресценция хлорофилла и фотосинтеза. Все измерения были проведены в последнюю неделю выращивания. Пять растений из каждой комбинации были приняты для измерений.
Эксперименты, проведенные в восьми повторений, где были три кашпо считаются одним повторением. Исследования проводились в двух сериях (повторности, друг за другом). Важность влияния источника света на высоту растений, длину гипокотиля, урожайности и листовой поверхности, а также физиологические показатели были определены с использованием ДИСПЕРСИОННОГО анализа. Различия между средними оценивали, используя критерий Ньюмена-кейлса на уровне значимости = 0.05. Все статистические анализы были проведены применения программы стат.
Сухая масса и площадь листовой данные были использованы для определения физиологических показателей роста, как описано на охоту [1982]: относительный темп роста (РГР), индекс листовой поверхности (ИЛП), скорость ассимиляции нетто (нар) и листьев на единицу площади (лар).
Показатель относительная скорость роста (РГР) была рассчитана на основании следующей формуле: РГР = (lnW2 – lnW1)(Т2 – Т1), где: W2 и W1 на заводе сухая масса (г), в моменты T2 и T1, соответственно.
Индекс листовой поверхности (ИЛП) относится к площади листовой поверхности по отношению к горшку области. Он был рассчитан на основе следующей формулы: ИЛП = А/Р, где: А – площадь ассимиляционной завод (дм2), П – площадь бака (сд2).
Чистая усвоения ритма (НСР) - это прирост биомассы в единицу времени и на единицу измерения любой величины ассимиляции органов: нар = дв/(а·DT), где: а – площадь ассимиляционной органов (дм2), ДГ – прирост сухой массы (г), ДТ – время культивирования (дни).
Удельная площадь листьев (ОАС) определяется как отношение площади листьев к массе сухого вещества листьев. ОАС = ла/ВБ, где: ла – площадь листьев (дм2), ДВ – сухая масса листьев (г).
РЕЗУЛЬТАТЫ
Результаты показывают, что свет от люминесцентных ламп, вероятно, был более выгодным, чем света, полученных из светодиодов для растений базилика. Эти растения растут под FL лампами были характерны высокий травостой массы и большей стрелять высоты (табл. 2). В случае мелиссы, различий в росте растений в зависимости от источников света не столь заметна. Высоты растений и листовой поверхности растений, лимонного бальзама были немного больше в растениях, выращенных под светодиодами, но различия были не существенны. Также травостой массы в первые три недели выращивания был достоверно выше у растений под светодиодами.
Таблица 2. Морфологическая характеристика базилик и лимонный бальзам растения, выращенные под люминесцентными лампами (ЛЛ) и светодиодами
| Растение | День роста | Свежая масса (г) | Гипокотиль (см) | Высота (см) | Площадь листьев (см) | ||||
| FL | LED | FL | LED | FL | LED | FL | LED | ||
| Сладкий базилик | 3.7 a* | 2.7 b | 2.7 a | 2.1 b | – | – | 0.68 a | 0.64 a | |
| 8.2 a | 7.3 b | 4.2 a | 4.1 a | 5.1 a | 4.9 a | 3.3 a | 2.8 b | ||
| 20.3 a | 15.5 b | 4.5 a | 4.9 a | 9.7 a | 8.7 b | 7.3 a | 6.5 a | ||
| 29.8 a | 23.6 b | 4.9 b | 5.8 a | 16.4 a | 14.9 b | 8.4 a | 8.2 a | ||
| Лимонный бальзам (мелисса) | 0.78 b | 1.02 a | – | – | 1.3 a | 1.5 a | 0.65 a | 0.71 a | |
| 2.5 b | 3.3 a | – | – | 3.9 a | 3.8 a | 1.7 a | 1.7 a | ||
| 4.8 b | 7.1 a | – | – | 4.6 a | 4.7 a | 3.9 a | 4.0 a | ||
| 8.3 a | 8.6 a | – | – | 7.6 a | 8.0 a | 6.0 a | 6.3 a |
*Разные буквы в строки и даты указывают на значительные различия при p < 0,05
Таблица 3. Индексы роста базилик и лимонный бальзам растения, выращенные под люминесцентными лампами (ЛЛ) и светодиодами
| Растение | День роста | LAI (dm2 dm-2) | SLA (dm2 g-1) | RGR (g g-1 d-1) | NAR (g dm-2 d-1) | ||||
| FL | LED | FL | LED | FL | LED | FL | LED | ||
| Сладкий базилик | 1.4 a* | 1.3 a | 2.55 a | 2.80 a | – | – | – | – | |
| 6.8 a | 5.7 b | 3.79 a | 3.92 a | 0.10 a | 0.10 a | 0.055 a | 0.035b | ||
| 15.4 a | 13.4 a | 6.14 b | 7.30 a | 0.07 a | 0.08 a | 0.017 b | 0.020 a | ||
| 17.2 a | 16.8 a | 5.46 b | 6.42 a | 0.09 a | 0.05 b | 0.010 a | 0.014 a | ||
| Лимонный бальзам (мелисса) | 1.3 a | 1.4 a | 0.71 b | 0.81 a | – | – | – | – | |
| 3.5 a | 3.5 a | 0.52 b | 0.75 a | 0.11 a | 0.08 b | 0.21 a | 0.12 b | ||
| 8.0 a | 8.1 a | 0.55 a | 0.56 a | 0.04 b | 0.09 a | 0.15 a | 0.17 a | ||
| 12.2 a | 12.9 a | 0.71 a | 0.74 a | 0.05 a | 0.03 a | 0.07 a | 0.04 b |
*Разные буквы в строки и даты указывают на значительные различия при p < 0,05.
Оба источника света не влияет на индекс (ЛАИ) в исследованных видов (вкладка. 3). В начале роста мелиссы (после 14 и 21 день), удельная площадь листа (СЛА) был больше у растений под светодиодами. В течение последующих дней культивирования, не было выявлено никаких различий в ценности соглашения об уровне обслуживания между растений, выращенных под люминесцентными светильниками и те, выращенных под светодиодными модулями. Базилик растения, выращенные под светодиодами были характерны более высокие значения ОДС в 21-й и 28-й день культивирования. Не было никаких различий в значениях относительных темпов роста (РГР) между Василием растений, выращенных в ФЛ лампы и светодиоды для следующих двух измерений. Только на 28-й день выращивания, растения под FL лампы были характерны более высокие значения РГР. На 28-й день выращивания растений лимонный бальзам (второе измерение), более высокие значения РГР были получены для светодиодов, но после 28 дней – эти значения были выше для FL светильники. На 35-й день, не было никаких различий в применяемых источников света. Значение нетто-коэффициент усвоения (нар) был изначально (14 дней) выше для Василия в соответствии с ФЗ ламп, но после 21-го дня, оно изменилось в пользу растений под светодиодами. По истечении этого времени, не было никаких различий. Мелисса была характерна более высокая ценность нар по ФЛ лампы после 21-й и на 35-й день. После 28-й день, не было никаких различий. С учетом физиологических показателей – нет четкого воздействия источника света можно было увидеть на значения РГР и нар.
Таблица 4. Эффект люминесцентных ламп (ЛЛ) и светодиодами с интенсивностью фотосинтеза, устьичной проводимости и ФС II квантовое поле в 28-м (базилик) и 35 (бальзам) день культивирования
| Растение | Источник света | Чистый показатель фотосинтетической (mol CO2 m-2 s-1) | Устьичную проводимость (mol·m-2·s-1) | Максимальный квантовый выход в PSII (Fv/Fm) |
| Сладкий базилик | FL | 6.0 a | 0.34 a | 0.80 a |
| LED | 6.0 a | 0.26 b | 0.81 a | |
| Лимонный бальзам | FL | 7.3 a | 0.52 a | 0.80 a |
| LED | 6.3 b | 0.51 a | 0.80 a |
Разные буквы в столбцах указывают на значительные различия при p < 0,05.
Таблица 5. Относительное содержание хлорофилла (SPAD) в листьях в последнюю неделю выращивания
| Растение | Тип лампы | |
| FL | LED | |
| Сладкий базилик | 37.4 a | 29.9 b |
| Лимонный бальзам | 25.7 a | 26.5 a |
Разные буквы в столбцах указывают на значительные различия при p < 0,05
Значение конечного фотосинтеза не зависит от источника света для базилик растений (табл. 4). В листьев мелиссы, чистая скорость фотосинтеза была выше на 38% по ФЛ свете, чем под светодиоды. Не было никаких различий в флуоресцирования (ФВ/ФМ) между источниками света для обоих видов и только растения базилика были характерны более высокие значения содержания хлорофилла и устьичной проводимости под FL лампы (таб. 5).
Темпы роста базилик и лимон растения бальзам...
ОБСУЖДЕНИЕ
Причина зафиксированы высокие различия, скорее всего, кроется в различиях между спектры источников света используются. Светодиоды, излучающие белый свет характеризовались большей долей синего и зеленого света, и меньшая доля УФ в спектре и низким R:коэффициент FR в сравнении с люминесцентными лампами.
Большая доля синего света в спектре светодиодные модули могли бы быть направлены на подавление стрелять удлиненность под светодиоды. Некоторые авторы сообщили, что синий свет определяет более короткие междоузлия растений [Ким и соавт. 2004а, Johkan и соавт. 2010]. Однако, в исследовании Gowacka [2008], Высшая базилик растения были получены в лечении, где был только синий свет применяется в сравнении с белым или смешанным (белый + синий) свет. Большая высота растений базилика в настоящем исследовании был записан для растений, выращенных в жидких пробок в последние две недели выращивания. Удлиненность стержня, между прочим, зависит от красной и дальней красной (соотношение Р:ФР) [Alokam и соавт. 2002]. В ответ на низкий Р:соотношение сигналов ФР, многие растения отображать быстрое и выраженное увеличение роста удлинение стеблей и черешков, часто за счет листьев и хранения развития органа [Франклин и Whitelam 2005]. ФЛ ламп характеризуется высоким процентом красного до дальнего красного света, который мог тормозил рост гипокотиля.
Был более слабый эффект на рост растений наблюдается в лимонный бальзам для источника света. Аналогично результатам, полученным в настоящем исследовании, в более ранних экспериментах, Gowacka [2008] нашли, что высота лимонами бальзама зависит от света цвет только на последней стадии роста. По данным Gowacka [2008], высших растений выпускались под голубого света; в этом исследовании было под светодиоды.
Более свежей массы продуктивность у растений базилика, произрастающих в ФЛ светильники можно в значительной степени объяснить значительно большую долю в эти лампы красного света (23.6%) по сравнению со светодиодами (14.2%). Кроме того, Фолта и Чайлдерс [2008] утверждают, что синий (B) красный (R) в легкой пропорции также важны. Вышеуказанные исследователи утверждают, что соотношение 1B:3R гарантирует соответствующего роста и развития растений земляники. По мнению этих авторов, такие результаты указывают на удлинение подавления черешок голубым светом кульминацией в большой массе и длине на черешок в условия, в которых голубой свет теряется с увеличением красного. Однако количество синего света, необходимого или оптимального для разных видов-это постоянный вопрос [масса соавт. 2008]
Более свежий травостой масса базилик растений, выращенных под люминесцентными лампами также может быть объяснено стимулирующим действием УФ-излучения, который составил 1,4% от спектрального состава. Хотя в различных исследованиях от УФ-излучения, ингибирующее влияние на рост растений была определена в различных видов [Яо и соавт. 2006, Brazaityt и соавт. 2009]. Результаты аналогичные тем, которые записаны в данном исследовании, докладывались на Brazaityt и соавт. [2010]. Было установлено положительное влияние дополнительного ультрафиолетового излучения на скорость роста растений, встречающихся на поздних стадиях выращивания саженцев томатов.
Лимонный бальзам является одним из видов медленного роста в начальный период выращивания. Это низкие темпы роста могли бы также способствовало отсутствие заметных различий в росте растений в зависимости от применяемого источника света. В исследовании Gowacka [2008], наибольшее свежий травостой массы был произведен, когда растения выращивались только под синий свет, в то время как она была низкой в случае белого света. В этом исследовании, за первые 28 дней выращивания, значительно более свежей массы были получены под светодиоды по сравнению с люминесцентными лампами.
Несмотря на большие различия в травостое массы, особенно в случае с Василием, без существенных различия в площади листьев у обоих видов в зависимости от источника света применяется. Кроме того, умеренные различия в высоте растений также показывают, что базилик растений, выращенных в ФЛ лампы более компактны и более толстые листья большей массы.
Нет очевидной зависимости между значениями индексов роста на применяемые источники света. Большее влияние на значения этих показателей для их синусоидальный характер, чем для света. Такой параметр, как ОАС, которая зависит от условий выращивания, могут описать морфологические адаптации к этой среде, в то время как нетто-коэффициент усвоения (нар) – физиологическая адаптация [де Гроот и соавт. 2001]. В начальный период роста, более высокое значение нар в случае Василия был записан под ФЛ лампы. В отличие от этого, более высокое значение ОАС нашли для растений, выращенных в ФЛ ламп за последние две недели роста. Это может быть утверждал, что базилик растения физиологически лучше приспособлены расти в ФЛ, но морфологические адаптации не было установлено. С другой стороны, Мелисса была характерна противоположная реакция. В исследовании Brazaityt и соавт. [2010], SLA для рассады томата была самой высокой, когда растения выращивали под натриевыми лампами в сравнении с растениями, выросшими под светодиоды, излучающие красный и синий свет. Однако, Давид был высоким для светодиодов, излучающих красный-синий свет (РБ) с добавлением оранжевого и желтого цвета.
Более высокие значения интенсивности фотосинтеза в мелиссы наблюдалась фл ламп, и это было не коррелирует со свежим массового производства растений или относительного содержания хлорофилла в листьях. Вероятно, более высокое значение чистой скорости фотосинтеза была связана с более выгодной доля красного света (R) в люминесцентных ламп в сравнении со светодиодными модулями. Общепризнано, что красный и синий свет (РБ) - усиливает рост и развитие растений за счет увеличения интенсивностью фотосинтеза, поскольку спектральное распределение энергии РБ соответствует поглощения хлорофилла [Ким и соавт. 2004в, Ли и соавт. 2012]. В изучении Ин и соавт. [2011], фотосинтез под различные цвета света была увеличена, с лечением РБ показывает максимальное усиление. Вышеуказанные исследователи также предположили, что синий свет является одним из основных факторов для развития хлоропластов. Для Василия растений, не было никаких различий в интенсивности фотосинтеза. Известно, что синий свет (B) влияет на содержание хлорофилла [Мао и соавт. 2007]. Кроме того, Мацуда и соавт. [2008] отмечено, что добавление синего света с красным светом значительно увеличивается PN и способствовало росту, голубой свет также увеличение устьичной проводимости. Однако, базилик растения под лампы ФЛ (7.5% Б) были характерны более высокие значения устьичной проводимости и относительного содержания хлорофилла, чем растения под светодиодами (16.3% Б). По словам Ким и соавт. [2004а], зеленый свет реверсирование синий-светло-стимулированной устьичного отверстия происходит в ряде видов; это явление особенно заметно с большей долей зеленого и нижнюю часть красного света. Также по данным Фолта и Maruhnich [2007], зеленый свет разрушает некоторые синий реакции, такие как открытие устьиц. В последнее время многие исследователи пришли к выводу, что помимо участия отдельных цветов светового спектра, их взаимные пропорции и взаимодействия также важны [Фолта и Maruhnich 2007, Ин соавт. 2011].
Отсутствие различий между растений, выращенных в ФЛ ламп и светодиодов в квантовый выход ФС II указывает, что были допущены нарушения в легких в зависимости от реакции фотосинтеза в растениях, выращенных под обеими источниками света. Значение ФС II ниже 0,8 показывает, что растения были в определенной степени стресс. Больше ФВ/значения FM вылиться в большую светлую эффективность использования и высокую способность растений адаптироваться к низкой освещенности. При нормальных физиологических условиях, ФВ/ФМ ценностей подавляющего большинства растений С3 в пределах 0.80–0.84 диапазон [от Wu и соавт. 2012].
ВЫВОДЫ
Реакция параметров роста на качество белого света в базилик и лимон растения существенно отличался. Полученные результаты показывают, что источник света и его спектрального распределения должна быть скорректирована индивидуально для каждого вида растений. Свет люминесцентных ламп с его повышенной долей красного света по отношению к голубому свету, оказывал значительно более выгодное влияние на рост сильно растет базилик растений. Наши эксперименты показали, что большую долю синего, чем красного света в спектре не было выгодно для роста растений базилика. В случае медленно растущих растений, лимонный бальзам, качество света не влияет на рост растений, но она оказала значительное влияние на объем фотосинтеза. Резюмируя, можно сделать вывод, что анализируя влияние различных источников света на рост растений, необходимо учитывать влияние отдельных цветов, а также их взаимного сотрудничества (положительное или отрицательное) и ее влияние на растения. Будущие исследования должны идти в этом направлении.
БЛАГОДАРНОСТИ
Исследования были поддержаны Министерством науки и высшего образования, Грант№. NN310 444538.
ССЫЛКИ
С. Alokam, С. Chinnappa С., Рид М. Д., 2002. Красный/дальний красный свет опосредованной трубку и накопление антоцианов в Звездчатка longipes: дифференциальные ответ альпийских и степных экотипов. Обозр. Я. Бот. 80, 72-81.
А. Brazaityt, Duchovskis П. А. Urbonaviit, Samuolien Г., Jankauskien Ж., З. Н Близникас, А. Novikovas, Breiv К., Kasiuleviit-Bonakr А., ukauskas, 2009. Эффект светодиодов освещение пересадка огурца и последействие на урожайность. Сельское Хозяйство Zemdirbyste 96(3), 102-118.
А. Brazaityt, Duchovskis П. А. Urbonaviit, Samuolien Г., Jankauskien Ж., Ж. Sakalauskait, abajevien Г., Sirtautas Р., Novikovas А. 2010,. Эффект светоизлучающие диоды освещение на рост саженцев томатов. Zemdirbyste-Сельское Хозяйство 97(2), 89-98.
де Гроот С. С., Marcelis л. Ф. М., Ван ден Боогаард р., Ламберс Х., 2001 и роста сухой массы перегородки в томатном как пострадавших от фосфорного питания и свет. Растительной Клетки Окру. 24, 1309-1317.
Фолта К. М., Чайлдерс С. К. 2008,. Свет в качестве регулятора роста: контролировать биологии растений с узкой полосой пропускания полупроводниковая осветительная. Хорт ТСМ. 43(7), 1957-1964.
Фолта К. М., С. А. Maruhnich 2007,. Зеленый свет: сигнал, чтобы замедлить или остановить. Ж. Эксп. Бот. 58(12), 3099-3111.
А. Франклин К., Whitelam С. Г., 2005 Г. Фитохромов и тени-уклонение от ответов. Энн. Бот.
(Лонд.) 96, 169-175.
Gowacka Б., 2008. Влияние состава spektralnego света на рост рассады базилика заурядного (Ocimum basilicum L), мелиссы (Melissa officinalis L.) и раз посадит бурачник лекарственный (Borago officinalis L.). Прошлом. Пост. Наук Rol. 527, 131-138.
Хо Дж., Ли С., ПЭК К., 2002. Особенности роста и цветения на некоторые постельные принадлежности растений, выращенных в смешении люминесцентные лампы и светодиодные. АСТА Хорт., 580, 77-82.
Хант Р., 1982. Кривые роста растений, функционального подхода к заводу анализ роста. Эдвард Арнольд, Шеффилд, 16-46.
Джао к. к., в. клыков, 2003. Регулируемый источник света для фото-фито исследований и молодого производства. Заявл. Англ. СМА. 19(5), 601-608.
Johkan М., Седзи К. Гото Ф., Hashida С., Yoshihsra Т. 2010,. Синий светодиод облучения проростков улучшает качество рассады роста после пересадки в салат красный лист. Хорт ТСМ. 45, 1809-1814.
Ким г. Х., г. Д. Гойнс, Уилер р. м., Сагер Ж. К., 2004а. Устьичную проводимость листьев салата, выращенного под или воздействии различных световых качеств. Энн. Бот. (Лонд.) 94, 691-697.
Ким С. Ю., е. Ю. Хан, Хо Дж, пика К. Ю., 2004в. Эффекты светодиодов с интенсивностью фотосинтеза, роста и устьица листьев хризантемы проростков в лабораторных условиях. ТСМ. Хорт. 101, 143-151.
Козаи Т. Охиямы К. С. Чунь 2006,. Коммерциализируется закрытых системах искусственного освещения растительного производства. АСТА Хорт. 711, 61-70.
Ли Х., С. Тан, Сюй З., Лю Х., Хан Х., 2012. Влияние различных источников света на рост не подрубрике китайская капуста (капуста Полевая л.). Ж. СМА. ТСМ. 4(4), 262-273.
Лю Х., ГУО С., З. Сюй Цзяо Х., Такафуми Т., 2011. Регулирование ультраструктуры хлоропластов, анатомия срез листьев, строению устьиц из помидоров Черри с помощью различных световых излучений светодиодов. HortSci. 46(2), 217-221.
Л. Мао Ж., Лу Н. Ф., Ван В., Цай М. М., 2007,. Сравнительные особенности фотосинтеза Calycanthus китайского лимонника и Chimonanthus ргаесох. Photosynthetica 45(4), 601-605.
Масса Д. Г., Ким Н. Н., Уилер Р. М., С. А. Митчелл 2008,. Продуктивность растений в ответ на светодиодное освещение. HortSci. 43(7), 1951-1956.
Мацуда Р., Охаси-Канеко К., Фудзивара К., Курата К., 2008. Последствия дефицита синий свет на акклиматизации свет разделения энергии в ФС II и способность к ассимиляции СО2 высокой облученности в листьях шпината. Растительной Клетки Физиология. 49, 664-670.
Максвелл К., Г. Н. Джонсон, 2000. Флуоресценция хлорофилла – практическое руководство. Ж. Эксп. Бот. 50, 659-668.
Морроу р. 2008,. Светодиодное освещение в цветоводстве. HortSci. 43(7), 1947-1950.
В. Г. Stutte 2009,. Светоизлучающие диоды для работы аппарата фитохрома. HortSci. 44, 231-234.
Ву Ф., Л. П., Ву Я., 2012. Влияние различной освещенности на характеристики флуоресценции хлорофилла и урожайность в салат. HortSci. 135, 45-51.
ЯО Ю., Ян Ю. Ю., Рен Дж., Ли С. 2006,. УФ-спектры зависимость сеянец травмы и изменению фотосинтетических пигментов в Cucumis посевной и глицин Макс. ОКР. Эксп. Бот. 57, 160-167.
Ин Л. X., Широнг Г., Чжиган Х., XueLei Я., 2011. Регулирование ультраструктуры хлоропластов, поперечное сечение, анатомия листьев, строению устьиц из помидоров Черри на другой свет излучения светодиодов. HortSci 46(2), 217-221.
ДИНАМИКА РОСТА РАСТЕНИЙ БАЗИЛИК ОБЩЕГО И МЕЛИССЫ, ВЫРАЩИВАЕМОЙ ПОД ЛАМПАМИ ЛЮМИНЕСЦЕНТНЫМИ И СВЕТОДИОДАМИ
Аннотация. Целью эксперимента было сравнение влияния двух источников белого света: люминесцентных ламп и светодиодных модулей на рост и развитие растений базилик общий (Ocimum basilicum L.) и мелиссы (Melissa officinalis L.). Опыт проводился в камерах растительность, в контролируемых условиях. Было установлено разнообразную реакцию растений на применяемые источники света. Базилик обладать более свежей массой травы и высотой побегов под люминесцентными лампами. Применяемые источники света не должны были в то время существенного влияния на площадь листьев и нетто-фотосинтез этих растений. Источники света не влияют на динамику роста растений мелиссы, но растения были отмечены большим значением нетто-фотосинтеза, когда выращивали под люминесцентными лампами.. Подводя итог, можно сделать вывод, что реакция растений на примененные свет индивидуальна и зависит от жанра.
Ключевые слова: Ocimum basilicum, Мелисса лекарственная, LED, FL, источник света