Инфекционный иммунитет. По происхождению различают естественный, или врождённый, и приобретённый, или адаптивный, И. 22 страница
+++
культура тканей, тканевая культура, метод выращивания вне организма в искусственно созданных условиях клеток, тканей или органов. В культурах тканей и органов (главным образом органы эмбрионов) поддерживают их жизнеспособность или рост при сохранении дифференциации ткани, структуры и функции органа. Изолированный кусочек ткани или органа, используемый для культивирования вне организма, называют эксплантатом. Культура клеток растёт вне организма без образования тканей.
В биологических исследованиях чаще применяют однослойные К. т. — популяции клеток, растущих на поверхности твёрдого субстрата (стекло, металл, пластмасса) в виде непрерывного слоя, и суспензионные К. т., в которых клетки сохраняют жизнеспособность или размножаются взвешенными в питательной среде. В зависимости от степени приспособления к условиям культивирования различают пять типов культур клеток: первичная культура клеток, получаемая из тканей или органов, взятых непосредственно из организма (культура считается первичной до тех пор, пока её не пересеяли), линия клеток — первичная культура со времени получения субкультуры (пересева); стабильная линия клеток — клетки, способные размножаться (пересеваться) in vitro до бесконечности; линия диплоидных клеток — линия клеток, в которой не менее 75% клеток сохранили нормальный исходный кариотип; штамм клеток — популяция однородных по одному или нескольким признакам диплоидных клеток, сохраняющая специфические свойства в течение определённого периода (до 50 пассажей). В дальнейшем штамм клеток или погибает, или превращается в стабильную линию клеток; при этом нормальный кариотип сменяется гетероплоидным набором хромосом. В первичных К. т. сохраняется тканевая специфичность клеток. Этим объясняется морфологическая неоднородность таких К. т. (рис. 1). При длительном культивировании тканевая специфичность клеток выражена слабо, поэтому клетки многих линий сходны друг с другом (рис. 2).
При культивировании наиболее прихотливы К. т. теплокровных животных, наименее — К. т. растений. Для выращивания культур, кроме факторов питания, необходимы соответствующие температура, осмотическое давление, pH, ионный и газовый состав среды. Для клеток большинства млекопитающих и птиц оптимальная t 36—38{{°}}C, для клеток насекомых и холоднокровных позвоночных — 20—25{{°}}C. Для клеток млекопитающих и птиц оптимальное осмотическое давление при t 38{{°}}C — 7,6 атм. Клетки большинства животных хорошо растут при pH 7,0—7,3. Оптимальная концентрация О2 в К. т. близка к содержанию его в воздухе. В питательной среде должны присутствовать ионы натрия, калия, кальция, магния, хлориды, фосфаты и глюкоза. Потребность в питательных веществах определяется характером К. т. Для длительного роста и размножения клеток млекопитающих требуется по меньшей мере 13 аминокислот, витамины группы B и сыворотка крови. Среды для кратковременного культивирования К. т. могут содержать меньше питательных веществ, в их состав не входит сыворотка. Питательные среды, которые обеспечивают рост К. т., называют ростовыми; среды, обеспечивающие сохранение жизнеспособности К. т., — поддерживающими.
Первичные культуры получают из клеток, выделенных из тканей с помощью протеолитических ферментов (чаще трипсина). Их, как правило, выращивают в среде, состоящей из солевого раствора Эрла или Хенкса, 0,5% гидролизата лактальбумина, 0,1% глюкозы и 5—10% сыворотки крупного рогатого скота. Для выращивания линии клеток и штамма клеток используют синтетические среды, содержащие аминокислоты, витамины и обогащённые сывороткой (среда Игла и др.) и другими важными метаболитами (среда 199 и др.). Такие же среды применяют при длительном культивировании тканей и органов зародышей. К. т. выращивают в стеклянных, пластмассовых или металлических сосудах различной формы и ёмкости (рис. 3). Однослойные культуры чаще выращивают в стеклянных пробирках, матрасах Ру или в круглостенных флаконах. Клетки растут на внутренней поверхности культурального сосуда, смачиваемой питательной средой. Так как диплоидные культуры растут только на поверхности твёрдого субстрата, для их массового выращивания предложены специальные аппараты, обладающие большой внутренней поверхностью. Стабильные линии клеток во многих отношениях сходны с одноклеточными организмами и с успехом могут расти в перемешиваемой суспензии в металлических реакторах, полуавтоматических аппаратах. Тканевые эксплантаты или органы эмбрионов чаще всего помещают на сетчатую подставку (плот), расположенную в чашке Петри и полностью погружённую в питательную среду (рис. 4). Реже готовят суспензию тканевых эксплантатов в жидкой питательную среде.
Однослойные и суспензионные К. т. позволяют изучать различные вопросы биологии, в частности вирусологии, на клеточном уровне. С их помощью расшифрована этиология и разработана диагностика многих заболеваний и созданы средства специфической профилактики вирусных болезней человека и животных. К. т. используют как питательный субстрат для размножения вирусов. В производстве вакцин широко применяют первичные культуры клеток, штаммы клеток, суспензию тканевых эксплантатов и суспензию клеток трипсинизированной ткани. Тканевые эксплантаты и органы эмбрионов в основном используют при изучении морфогенеза и физиологии тканей. К. т. оказались весьма перспективным методом выведения безвирусных линий растений.
Лит.: Голубев Д. Б., Соминина А. А., Медведева М. Н., Руководство по применению клеточных культур в вирусологии, Л., 1976; Новые методы культуры животных тканей, пер. c англ., М., 1976.
Рис. 1. Культуры ткани почек свиньи (а) и крупного рогатого скота (б). Три морфологически различных типа клеток.
Рис. 2. Линии клеток почки поросёнка (а), миндалин обезьяны (б), СПЭВ (в).
Рис. 3. Образцы посуды, используемой для культивирования тканей: 1 — камера для культивирования в висячей капле; 2 — флаконы Карреля (тип Д); 3 — флаконы Эрла тип Т); 4 — пробирки (а — бактериологическая; б — Лейтона малая; в — Лейтона большая); 5 — матрасы; 6 — колбы для суспензионных культур; 7 — сосуд для суспензионных культур.
Рис. 4. Культура органа на «плоте» из металлической сетки; а — подготовка эксплантата; б — перемещение культуры на часовое стекло.
+++
кумбса реакция, серологическая реакция, позволяющая обнаружить неполные антитела, фиксированные на поверхности эритроцитов или содержащиеся в плазме крови. К. р. основана на применении антиглобулиновой сыворотки, получаемой путём гипериммунизации кроликов нормальным глобулином сыворотки крови человека или того вида животного, у которого выявляют неполные антитела. Сущность реакции состоит в способности неполных антител адсорбироваться на эритроцитах, в результате чего наступает сенсибилизация последних к антиглобулиновой сыворотке и агглютинация эритроцитов. В ветеринарной практике К. р. была испытана с положительным результатом для диагностики бруцеллёза сельскохозяйственных животных, оспы овец, пситтакоза и микоплазмоза кур.
+++
кумуляция (от лат. cumulo — накапливаю), усиление действия лекарстенного вещества при повторном его введении в лечебных дозах. Чаще К. обусловлена длительным пребыванием лекарстенного вещества в организме вследствие медленного выведения или разрушения его (К. материальная) или вследствие повышения чувствительности биологических структур, с которыми оно взаимодействует (К. эффекта). Многие лекарстенные вещества, введённые в организм, всасываются в кровь и распределяются по тканям быстрее, чем выводятся из организма или инактивируются в нём, поэтому при их частом введении наблюдается материальная К. Но большинство лекарстенных веществ применяют не чаще чем 2—3 раза в сутки, поэтому положительное влияние имеет К. при введении их через 8—12 ч. При таких условиях К. проявляется лишь у небольшого числа препаратов. Контроль за К. имеет важное значение в тех случаях, когда требуется длительное влияние лекарстенного вещества на организм, но неправильное использование его оказывает вредное воздействие на животное. Если препарат долго задерживается в организме, то повторные дозы должны только компенсировать разрушенную часть его. Если же препарат вызывает К. эффекта, то либо повторные дозы должны быть самые малые, либо интервалы между введениями препарата следует значительно увеличить. Изучение закономерностей К. позволило создать препараты пролонгированного действия, длительно сохраняющиеся в организме в определённых концентрациях и поэтому длительно действующие (например, дитетрациклин влияет химиотерапевтически до 14 сут).
+++
кумыс, пенящийся кисломолочный целебный напиток из кобыльего (реже коровьего) молока. Получают К. путём смешанного молочнокислого и спиртового брожения, вызываемого молочнокислыми бактериями (главным образом болгарской палочкой) и молочными дрожжами. К. содержит молочную кислоту, спирт и углекислый газ. Обладает антибиотическими свойствами, легко усваивается организмом и повышает усвоение пищи, улучшает аппетит и усиливает перистальтику кишечника. К. выпускают в узкогорлых бутылках ёмкостью 0,33 и 0,5 л, а К. из коровьего молока — и в широкогорлых бутылках. См. также Молоко.
+++
купание животных, водная процедура, способствующая механической очистке кожи и теплоотдаче, закаливанию организма. Купают животных также с лечебной и профилактической целями (см. Ванны, Водолечение). Животных купать лучше в проточной воде с температурой не ниже 18{{°}}C в течение 10—15 мин за 1 ч до кормления. Участок водоёма должен быть отлогим, с твёрдым дном, без ям и коряг. Нельзя купать больных животных и потных. После купания животных отгоняют в места, защищённые от ветра. Для купания свиней можно устраивать специальные бассейны около свинарника. Овец купают один раз в год для промывания руна. Овцы долго обсыхают, поэтому их надо тщательно оберегать от сквозняка. В стойловый период коров, свиней и кобыл перед родами моют только в тёплом помещении-сушилке при температуре не ниже 20{{°}}C.
+++
куперит (Couperitis), воспаление куперовых желез у самцов сельскохозяйственных и домашних животных. Возникает обычно в результате распространения воспалительного процесса с органов мочеполовой системы. Поражённая железа увеличена, болезненна. Болезнь иногда определяют только по исследованию спермы (обнаружение воспалительного экссудата, некроспермии).
Лечение: при остром течении — антибиотики, сульфаниламиды; при хроническом — физиотерапия, диатермия, массаж железы. См. также Придаточные половые железы.
+++
купирование ушей (от французский couper — резать, отрезать), ампутация ушной раковины преимущественно с косметич. целью, а также при язвах и новообразованиях. К. у. с косметической целью проводят у крупных собак в возрасте 8—12, а у собак мелких пород — 5—6 нед. Культе ушной раковины у догов и боксёров придают длинную и острую форму с несколько выпуклым и заострённым краем, у доберман-пинчеров — длинную и острую с ровным задненаружным краем, у терьеров — короткую с ровным задненаружным краем. Собаку оперируют в боковом положении. По линии ампутации с обеих сторон ушной раковины вводят новокаиновый раствор . Челюсти фиксируют бинтом. Наружный слуховой проход тампонируют. Кожу раковины сдвигают к основанию и накладывают ушной зажим, удалив по линии ампутации волосяной покров. Нижний зажим располагают ниже ушного кармашка, верхний — близ верхушки раковины или на границе её верхней и средней трети. Верхнюю часть раковины отсекают скальпелем вблизи зажима (рис.). Так же оперируют другую ушную раковину (шаблоном для ампутации уха другой стороны может служить удалённый участок раковины). Зажим снимают только после операции другого уха, но не ранее чем через 8—10 мин после ампутации. На кожу культи накладывают тонкой нитью узловатые швы, не захватывая хрящ. Рану покрывают дезинфицирующей мазью. Обе оперированные ушные раковины, подложив под них марлевую подушку, укладывают на затылке и прибинтовывают. Повязку снимают на 3—4е сут и делают ревизию раны. Швы снимают на 7е сутки.
Ампутация ушной раковины у собаки.
+++
курареподобные препараты, мышечные релаксанты, группа лекарственных средств, блокирующих, подобно кураре, передачу возбуждения с окончаний двигательных нервов на скелетные мышцы, в результате чего наступает обездвиживание животного. По механизму действия различают К. п. центрального и периферического действия. К. п. центрального действия (мепротан, мефенезин) вызывают расслабление мускулатуры, воздействуя на вставочные нейроны промежуточного и спинного мозга. К. п. периферического действия, чаще применяемые в практической анестезиологии, подразделяют на две группы: препараты недеполяризующего (конкурентного) типа действия, препятствующие действию ацетилхолина в области нервно-мышечного синапса (dтубокурарин, диплацин, парамион, пиролаксон, мелликтин и др.), и препараты деполяризующего типа действия, вызывающие стойкую деполяризацию (электроотрицательность) синаптич. зон (дитилин, декаметоний и др.).
В ветеринарной практике К. п. применяют в сочетании с местноанестезирующими веществами, что позволяет проводить различные манипуляции на животном, не прибегая к фиксации; при отлове диких животных и для обездвиживания зверей в зоопарках; для предубойного обездвиживания пушных и морских животных (дитилин). К. п. назначают парентерально, главным образом внутримышечно. Они дозируются в расчёте на 1 кг массы животного. В случаях неточного определения массы возможна передозировка, приводящая к ослаблению или остановке дыхания.
Лит.: Наставление по применению дитилина ..., в кн.: Ветеринарное законодательство, т. 2, М., 1972, с. 89-92.
+++
кусмаулевское дыхание [по имени немецкого врача А. Кусмауля (A. Kussmaul)], патологическое дыхание, характеризующееся редкими, глубокими и судорожными вдохами с продолжительными паузами. Возникает при пониженной возбудимости дыхательного центра. К. д. наблюдают, например, при уремии, энцефаломиелите.
+++
кутикулит (Cuticulitis), алиментарный гастрит птиц, болезнь, характеризующаяся язвенно-некротическим распадом кутикулы мышечного желудка. Чаще болеет молодняк всех видов птиц. Причины К. изучены недостаточно. Отмечено, что болезнь возникает при недостатке в рационе несушек и молодняка первых дней жизни витаминов A, D, Е и комплекса витамина В. Кутикула разрушается, изъязвляется, отслаивается от мышечной основы. При внедрении в поражённые участки микрофлоры возможна гибель птицы от сепсиса. Симптомы не характерны (общая слабость, потеря аппетита, взъерошенность перьев, понос, отставание в росте). Смертельность до 50%. У погибших птиц кутикула тёмно-коричневого цвета, легко рвётся, отслаивается от мышц, покрыта язвами и эрозиями. Под кутикулой — язвы и кровоизлияния. Слизистая оболочка железистого желудка и кишечника воспалена. Диагноз ставят по результатам патологоанатомического вскрытия и анализа кормов рациона. Необходимо исключить классическую чуму птиц.
Лечение и профилактика. В рацион вводят корма, богатые витаминами. Выпаивают 7—10 сут подряд раствор фуразолидона 1 : 1000. Больной птице дают 0,2%ный водный раствор сульфата железа или 0,02%ный раствор перманганата калия.
+++
Кьельдаля метод (по имени дат. химика И. Кьельдаля, J. Kjeldahl, 1883), способ количественного определения общего и остаточного азота, белков в органические соединениях, в том числе плазме и сыворотке крови. Для проведения анализа необходимы аппарат и колбы Кьельдаля. Определение азота производится после его предварительного превращения в сернокислый аммоний путём прибавления к сыворотке крови концентрированной серной кислоты. Сернокислый аммоний разлагается концентрированным раствором едкого натра. При этом образуется аммиак, который улавливается определённым количеством соляной или серной кислоты. Избыток кислоты определяют обратным титрованием её щелочью. Параллельно ставят контроль пробы только с реактивами (соляная или серная кислоты). По разности между количеством щёлочи, потраченной на титрование проб в контроле и опыте, рассчитывают содержание азота в исследуемой пробе. Чтобы определить процентное содержание общего белка, полученное количество азота умножают на коэффициент 6,25.
Лит.: Справочник по клиническим лабораторным методам исследования. 2 изд., М., 1975.
+++
кюретаж (франц. curettage, от curer — чистить, выгребать), выскабливание различных полостей, свищевых каналов, гранулирующих ран специальным инструментом — кюреткой, представляющей собой металлическую петлю, заострённую с одного края и снабжённую рукояткой.
+++
Л
+++
лабильность в физиологии (от лат. labilis — скользящий, неустойчивый), функциональная подвижность, способность нервной и мышечной тканей животного организма воспроизводить за 1 сек максимальное число импульсов (число электрических колебаний) в полном соответствии с ритмом действующих на неё раздражителей; скорость протекания в ткани циклов возбуждения, которым сопровождается её функциональная активность. Л. зависит от скорости химических процессов, протекающих в тканях. Понятие «Л.» имеет большое значение для понимания реактивности организма. Л. тканей повышается в процессе работы. Она может изменяться при патологических процессах, например при воспалении.
+++
лабораторные животные, животные, специально выращиваемые для проведения на них медицинских, ветеринарных и биологических исследований. К традиционным Л. ж. относятся белые мыши, белые крысы, различные виды хомяков, морские свинки, кролики, кошки, собаки; к нетрадиционным — хлопковые крысы, полёвки, песчанки, хорьки, опоссумы, броненосцы, обезьяны, мини-свиньи, мини-ослы, сумчатые животные, рыбы, амфибии и др. Имеется группа лабораторных птиц (куры, голуби, перепёлки и др.). Кроме Л. ж., в экспериментах используются домашние животные, чаще овцы и свиньи. Продуцентами иммунных и диагностических сывороток являются лошади, ослы, бараны и кролики. Находят применение в эксперименте и многие беспозвоночные (черви, клещи, насекомые, например дрозофила), а также простейшие.
Л. ж. контролируются по генетическим, экологическим, морфологическим показателям и по состоянию здоровья. Разводят их в специальных питомниках или в вивариях при научных учреждениях. Используемые в эксперименте нелинейные Л. ж. должны обладать высокой степенью гетерозиготности. Чем меньше закрытая популяция разводимых нелинейных животных, тем выше степень нарастания среди них инбридинга. Для исследований всё шире применяют гомозиготных (инбредных, линейных) животных, выводимых на основе тесного инбридинга (рис. 1). Известно около 670 линий мышей, 162 линии крыс, 16 линий морских свинок, 66 линий хомяков, 4 линии песчанок и 7 линий цыплят. Каждая линия имеет свои особенности в наборе генов, чувствительности к различным антигенам и стрессовым факторам. Линейные животные систематически контролируются на гомозиготность. При разведении Л. ж. получают у мышей 5 помётов в год, в среднем по 7 мышат в каждом помёте, соответственно у крыс — 5 и 7, у морских свинок — 3 и 5, у кроликов — 4 и 6. Помещения для Л. ж. (виварии) должны быть высокогигиеничными, просторными, с 10кратным обменом воздуха в 1 ч и влажностью воздуха 50—65%. На 1 м2 площади размещают 65 взрослых или 240 молодых мышей, 20—100 крыс, 30—40 хомяков, 15—18 морских свинок, 3—4 кролика. В одной клетке допускается содержать не более 15 мышей, 10 крыс, по 5 хомяков и морских свинок, 1 кролика. Не менее 50% площади вивария отводится под подсобные помещения. Во избежание обмена инфекционными агентами не допускается содержание разных видов Л. ж. в одной комнате или клетке. Мышей, крыс, морских свинок и хомяков содержат преимущественно в пластмассовых конусообразных ванночках с сетчатой крышкой; кроликов, собак, обезьян и птиц — в металлических клетках. Ванночки и клетки размещают на стеллажах в 1—6 ярусов (рис. 2), оборудуют автоматическими поилками и бункерными кормушками, перед использованием тщательно моют и дезинфицируют физическими или химическими средствами. Ванночки мышей и крыс еженедельно заменяют чистыми. Удаление из них подстилки и мойку производят в специальном помещении, оборудованном соответствующими приспособлениями или моющими машинами. Кормят Л. ж. натуральными кормами или брикетированными концентратами по разработанным нормам суточной потребности. Брикетированный корм задают в кормушки на несколько суток. Обслуживает Л. ж. обученный персонал, прошедший медицинское обследование.
Л. ж. свойственны многие инфекционные болезни: сальмонеллёзы, листериоз, стафилококкозы, оспа, вирусная диарея, лимфоцитарный хориоменингит, кокцидиозы, гельминтозы, микозы, клещевые поражения и др. Встречаются латентное носительство (особенно у крыс) патогенных бактерий и вирусов, скрытые формы инфекционных болезней мало изученной этиологии. Некоторые инфекции Л. ж. являются зооантропонозами. Профилактика болезней Л. ж. основана на строгом соблюдении санитарно-гигиенических правил, максимальном обеззараживании окружающей среды (помещений, воздуха, оборудования, кормов, подстилки и т. п.). В некоторых странах организовано производство Л. ж. без специфических патогенных факторов, так называемых СПФ-животных (см. Стерильные животные). Возрастающая потребность в Л. ж. обусловила зарождение науки о Л. ж., которая включает в себя генетику, экологию, морфологию, физиологию, патологию и др. разделы, а также специальное лабораторное животноводство. Во многих странах (США, Великобритании, ФРГ, Франции, СССР и др.) существуют соответствующие научные центры, координация работы которых осуществляется Международным комитетом по науке о Л. ж. (YCLAS).
Лит.: Башенина Н. В., Руководство по содержанию и разведению новых в лабораторной практике видов мелких грызунов. М., 1975; Санитарные правила по устройству, оборудованию и содержанию экспериментально-биологических клиник (вивариев), М., 1973.
Рис. 1. Линейные мыши.
Рис. 2. Стеллажи с ванночками для белых мышей и крыс и морских свинок.
+++
лактационный период, см. Лактация.
+++
лактация (от лат. lacto — содержу молоко, кормлю молоком), образование и накопление молока в молочных железах женских особей млекопитающих, а также периодическое его выведение во время сосания или доения. Развитие в процессе эволюции у млекопитающих молочных желез и способности вскармливать детёнышей молоком является одним из наиболее поздних филогенетических приобретений и служит примером важнейшего эволюционного скачка. В процессе одомашнивания животных под влиянием направленного воздействия человека произошло прогрессивное изменение молочной железы и увеличение молочной продуктивности у домашних животных. Молочные железы сельскохозяйственных животных чаще называют выменем.
Секреция молока — сложный рефлекторный процесс, связанный с последовательными структурными и функциональными изменениями железистых клеток и различных тканей молочной железы. Ещё во время беременности молочные железы проходят определённые стадии развития: в них образуются дополнительные секреторные альвеолы и протоки, которые замещают жировую ткань. Молочные железы увеличиваются в объёме, становятся более упругими. Формирование железистого эпителия и подготовка его к секреции и секреция осуществляются под влиянием половых гормонов — эстрогенов и гормона жёлтого тела — прогестерона, а также гормонов передней доли гипофиза (пролактин, соматотропин и др.) и плаценты (лактосоматотропин). Секреторные процессы в эпителиальных клетках железы начинаются ещё до родов и сопровождаются синтезом специфических компонентов молока. Л. начинается после родов отделением из молочной железы молозива, состав которого постепенно изменяется и оно приобретает свойства обычного молока. Молоко образуется в эпителиальных клетках альвеол и мелких выводных протоков из веществ, приносимых к молочной железе кровью, которые подвергаются в ней сложным химическим превращениям. Кроме того, в образовании молока участвуют и те ингредиенты, которые реабсорбируются из вымени в кровь. В секреторной функции железистой клетки различают 4 стадии: поглощение так называемых предшественников молока (белков, жиров и углеводов) из крови; синтез составных частей молока в секреторных клетках молочной железы; формирование, накопление и перемещение синтезированных продуктов внутри цитоплазмы секреторных клеток; отделение молока в полость альвеолы, протоки и цистерны вымени.
Процесс секреции молока осуществляется непрерывно и тесно связан с выделительной функцией органа. Почти всё молоко синтезируется и накапливается в интервалах между сосанием (доением), особенно интенсивно в первые 2—3 ч. В остальное время секреторный процесс в вымени протекает более или менее равномерно (в течение 12—15 ч). Молоко сначала заполняет альвеолы и мелкие протоки, затем часть его переходит в крупные выводные протоки и цистерну молочной железы. Этот переход осуществляется ритмически. Если вымя переполняется молоком и повышается давление в протоках, секреция молока приостанавливается. Оттоку молока в цистерны способствуют также массаж и вырабатывающиеся у животного с течением времени условные рефлексы на процесс сосания или доения. Таким образом, образование молока тесно связано с его выделением из ёмкостной системы вымени.
Секреторная деятельность молочной железы в значительной степени зависит от состояния многих функций организма — уровня энергетич. обмена, кровообращения, пищеварения и т. д. Между молочной железой и другими органами устанавливаются прочные рефлекторные взаимоотношения по принципу обратной связи. У лактирующих животных значительно увеличивается масса печени, так как в ней синтезируется основная масса предшественников молока. В лактирующей молочной железе скорость кровотока в несколько раз больше, чем в железе коровы сухостойного периода. Для синтеза 1 л молока необходимо, чтобы через железу коровы прошло не менее 500 л крови. Увеличение артериального кровотока вызывает усиленное наполнение кровью сосудистой системы железы, особенно соска, который напрягается, увеличивается в размере и тем самым облегчает его захватывание при сосании или доении (увеличивается тургор железы). Усиленный приток крови способствует быстрейшей доставке гормонов от гипофиза к железе, а расширение сосудов, особенно в альвеолярной зоне, обеспечивает наиболее полное их действие на сократительные и железистые структуры органа. Раздражение рецепторов молочной железы (сосание, доение, массаж) рефлекторно повышает моторную и секреторную деятельность всех отделов пищеварительной системы. Л. зависит также от типа высшей нервной деятельности животного. Более высокий уровень молочной продуктивности характерен для животных с сильными уравновешенными и подвижными нервными процессами. Процесс Л. поддерживается и определённой «настроенностью» центральной нервной системы лактирующего животного — лактационной доминантой, которая подкрепляется комплексом раздражений, поступающих в мозг и связанных с процессом образования и выведения молока из молочной железы. Нарушение нервной деятельности животного в промежутке между сосаниями или доениями может вызвать торможение секреторного процесса в молочной железе. Суточные ритмы Л. также определяются рефлексами на систему содержания животных. Так, у коров при равных интервалах между доениями и трёхкратном кормлении наиболее интенсивно образуются молоко и молочный жир в первую половину светового дня, медленнее — в ночное время, что связано с дневной активностью животного.
Процесс выведения молока в обычных условиях осуществляется рефлекторным путём, и его условно можно разделить на две фазы. Первая фаза возникает через 2—6 сек и продолжается 25—30 сек после механического воздействия. Раздражение рецепторов молочной железы вызывает передачу импульсов по нервным путям в центр Л., расположенный в гипоталамусе. Рефлекторно расслабляется сосковый сфинктер, активируется двигательная реакция гладкомышечных элементов и происходит выведение молока, находящегося в цистерне и крупных выводных протоках. Во вторую фазу (наступает через 25—30 сек после начала раздражения и продолжается несколько минут) в гипоталамусе образуются вазопрессин и окситоцин, а также рилизинг-гормон, который, поступая в гипофиз, вызывает секрецию пролактина, контролирующего Л. Окситоцин с кровью поступает к молочной железе и вызывает сокращение мышечных клеток эпителия альвеол. В результате выводится молоко, находящееся в альвеолах (рис.). При сосании и доении у животных вырабатываются условные рефлексы на отдельные звуковые, обонятельные, тактильно-механические раздражители, исходящие от детёныша или доярки, и на весь комплекс сигналов (стереотип), связанных с доением или сосанием. Эти сигналы тонко дифференцируются, в случае появления новых раздражителей происходит торможение рефлекса выведения молока. Но эта задержка через несколько повторений исчезает. Торможение рефлекса молоковыделения наблюдается у некоторых животных при нарушении стереотипа доения.